Выявление активирующих соматических мутаций в гене PIK3CA в опухолях молочной железы и определение их минимального набора для клинико-диагностического тестирования

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Обоснование. Для эффективного скрининга больных раком молочной железы с целью назначения таргетной терапии алпелисибом необходимо выявление активирующих соматических мутаций в гене PIK3CA методом аллель-специфичной полимеразной цепной реакции (ПЦР), для разработки которого требуется составить оптимальный список мутаций.

Цель – определение спектра соматических мутаций в гене PIK3CA в опухолях молочной железы методом таргетного высокопроизводительного секвенирования (англ. next generation sequencing, NGS) и установление их минимального набора для рутинного клинико-диагностического тестирования методом аллель-специфичной ПЦР.

Материал и методы. Для определения мутаций в гене PIK3CA в ДНК, полученной из парафиновых блоков с опухолевым материалом 431 пациентки с гормонозависимым HER2-отрицательным (HR+HER2-) раком молочной железы, использовали таргетное NGS. Набор наиболее часто встретившихся соматических мутаций также детектировали с помощью аллель-специ- фичной ПЦР.

Результаты. Нами разработаны набор реагентов и протокол проведения таргетного NGS часто мутируемых районов генов PIK3CA и ESR1, который был применен для анализа образцов HR+HER2- рака молочной железы 431 пациентки. Клинически значимые активирующие мутации в гене PIK3CA выявлены в 32,7% (141/431) образцов. Частота мутантного аллеля варьировала в пределах 15–65%. Наиболее часто встретились 6 мутаций: c.3140A>G p.His1047Arg (69), c.1633G>A p.Glu545Lys (32), c.1035T>A p.Asn345Lys (12), c.1624G>A p.Glu542Lys (9), c.3140A>T p.His1047Leu (8), Cys420Arg c.1258T>C (3). В сумме эти мутации составили 94,3% (133/141). В 3,5% (15/431) образцов обнаружены клинически значимые соматические мутации в гене ESR1 – c.1613A>G p.Asp538Gly (7), c.1610A>C p.Tyr537Ser (6), c.1609T>A p.Tyr537Asn (1), c.1610A>G p.Tyr537Cys (1), обусловливающие резистентность к гормональной терапии пациентов с раком молочной железы. Ввиду того что редкие мутации составили лишь 5,7% выборки, проведена валидация набора реагентов для детекции только 6 вышеперечисленных мутаций методом аллель-специфичной ПЦР. NGS и ПЦР показали полную конкордантность.

Заключение. ПЦР-тестирование активирующих соматических мутаций гена PIK3CA удовлетворяет требованиям к чувствительности (> 90%) и специфичности (100%) теста для клинического применения и может быть использовано при отборе пациентов для проведения таргетной терапии ингибиторами PIK3CA.

Полный текст

Фосфатидилинозитол-3-киназы (PI3Ks) – группа липидкиназ, являющихся значимыми компонентами сигнальных путей, стимулирующих клеточную пролиферацию, адгезию, выживание и подвижность [1]. Сигнальный путь PI3K играет важную роль в онкогенезе. Нарушение его регуляции связано с развитием различных онкологических заболеваний. Среди генетических изменений этого сигнального пути наиболее известны потеря опухолевого супрессора PTEN, амплификация гена AKT и активирующие мутации в генах PIK3CA и PIK3R1 [2].

Впервые соматические мутации гена PIK3CA при злокачественных опухолях человека описали Y. Samuels и соавт. [3]. Исследователи проанализировали нуклеотидные последовательности 8 PI3K и 8 PI3K-подобных генов первичных колоректальных опухолей и обнаружили, что PIK3CA был единственным геном, содержащим соматические мутации. Соматические мутации в гене PIK3CA, кодирующем каталитическую субъединицу p110α PI3K, наиболее часто встречаются при раке эндометрия и раке молочной железы (РМЖ) – до 50 и 40% случаев соответственно – и присутствуют более чем при половине всех солидных опухолей человека, но в меньшем проценте [4].

Соматические мутации гена PIK3CA могут быть разделены на 4 класса, определяемых 4 доменами каталитической субъединицы, в которых они встречаются: домен-адаптер (ABD), домен C2, спиральный домен и каталитический домен [5]. Большинство мутаций локализуется в 3 кодонах: E542 и E545 – в спиральном домене (экзон 9), H1047 – в киназном домене (экзон 20). E542 и E545 обычно заменяются на лизин, тогда как H1047 часто замещается аргинином. Мутации PIK3CA усиливают сигнал PI3K, стимулируют последующую передачу сигнала на AKT, что способствует росту опухоли, и повышают клеточную инвазию и метастазирование [5].

В силу того что нарушение регуляции сигнального пути PI3K является одним из наиболее частых драйверных мутационных событий при многих видах рака человека, воздействие на отдельные компоненты этого пути, и в первую очередь на PIK3CA, может быть потенциальным терапевтическим средством при различных злокачественных новообразованиях [6]. Эта идея в течение двух десятилетий активных поисков стимулировала разработку почти сотни ингибиторов сигнального каскада PI3K, которые в настоящее время проходят различные фазы клинических испытаний [7, 8]. Среди них можно выделить алпелисиб – низкомолекулярный специфический ингибитор PIK3CA [9]. В мае 2019 г. Управление по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов США (англ. Food and Drug Administration, FDA) по результатам III фазы рандомизированного исследования SOLAR-1 одобрило алпелисиб для лечения пациентов с позитивным по экспрессии гормональных рецепторов и негативным по амплификации гена HER2 (HR+/HER2-) РМЖ с активирующими мутациями PIK3CA [10]. Вместе с алпелисибом был также одобрен сопутствующий диагностический тест therascreen PIK3CA (QIAGEN, ФРГ) для отбора пациентов с мутациями PIK3CA с использованием образцов опухолевой ткани или образцов плазмы для анализа циркулирующей опухолевой ДНК. В основу дизайна набора therascreen PIK3CA, по-видимому, были положены данные спектра мутаций PIK3CA в различных типах опухолей. Он позволяет выявлять 11 мутаций в экзонах 9 и 20 гена PIK3CA.

Значительный прогресс в технологии секвенирования ДНК привел к резкому увеличению числа случаев обнаружения новых мутаций PIK3CA, в том числе не локализованных в экзонах 9 и 20. Закономерно возник вопрос о чувствительности диагностического теста therascreen PIK3CA и других появляющихся на рынке наборов реагентов для обнаружения соматических мутаций гена PIK3CA. Чтобы ответить на него, необходима информация о полном спектре соматических мутаций этого гена, полученных методом секвенирования. Систематических исследований соматических изменений гена PIK3CA у больных РМЖ в Российской Федерации не проводилось.

Цель исследования – определение спектра соматических мутаций в гене PIK3CA в опухолях молочной железы методом таргетного высокопроизводительного секвенирования (англ. next generation sequencing, NGS) и установление их минимального набора для рутинного клинико-диагностического тестирования методом аллель-специфичной полимеразной цепной реакции (ПЦР).

Материал и методы

Клинический материал

В исследовании использованы образцы ДНК, выделенные из парафиновых блоков с опухолевой тканью 381 больной с различными стадиями РМЖ, проходивших молекулярно-генетическое тестирование в Институте химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (ИХБФМ СО РАН) в 2019–2021 гг. Из них 46 пациенток получали неоадъювантную гормональную терапию. Проанализированы также образцы ДНК из парафиновых блоков с опухолевой тканью 71 больной РМЖ, которые получали комплексное лечение в КГБУЗ «Красноярский краевой клинический онкологический диспансер имени А.И. Крыжановского» (КГБУЗ «КККОД им. А.И. Крыжановского») с 2017 по 2020 г.

Проведение исследования одобрено этическим комитетом ИХБФМ СО РАН (протокол № 2 от 25.02.2018) и локальным этическим комитетом КГБУЗ «КККОД им. А.И. Крыжановского» (протокол № 6 от 22 марта 2016 г.). Все пациентки подписали информированное согласие на участие в исследовании.

Выделение ДНК проводили с помощью QIAamp DNA FFPE Tissue Kit (QIAGEN, ФРГ) согласно инструкции компании-производителя.

Таргетное высокопроизводительное секвенирование

Олигонуклеотидные праймеры для амплификации часто мутирующих областей гена PIK3CA, а также часто встречающихся соматических мутаций в генах AKT1, CDH1, ERBB2, ESR1, GNAS, IRF5, SF3B1 и KEAP1 были разработаны программой NGS-PrimerPlex [11]. Всего в NGS-панель вошли 24 пары праймеров, распределенных по двум мультиплексным реакциям (таблица). NGS-библиотеки были приготовлены при помощи двухстадийной ПЦР, при которой на первом этапе происходит наработка ген-специфичных последовательностей с праймеров, содержащих адаптеры на 5'-конце, а на втором – встройка индексирующих последовательностей с адаптерами для секвенирования технологией Illumina [12]. Секвенирование проводили на приборе MiniSeq Illumina с использованием картриджа MiniSeq Mid Output Kit 300 cycles (Illumina, США). Анализ NGS-данных был выполнен по протоколу, описанному ранее [13], с добавлением аннотации выявленных вариантов по базе данных COSMIC (release 70) [14].

 

Информация о праймерах, вошедших в таргетную NGS-панель для секвенирования гена PIK3CA

Прямой праймер

Обратный праймер

Хромосома

Начало

Конец

Кодоны PIK3CA или ген

AGAATGTTTACTACCAAATGGAATGA

AAATAGTTCATGCTTTATGGTTATTAATGTAG

3

178916679

178916763

32–39

AGATGAATCTTCTTACATTTTCGTA

GGGTTGAAAAAGCCGAAG

3

178916802

178916904

73–90

ACAAGACGACTTTGTGACCT

CTCGATTGAGGATCTTTTCTTC

3

178916869

178916959

93–118

AAGTAATTGAACCAGTAGGCAAC

TTGCATTTTAGAATAGGATATTGTATCATAC

3

178916912

178916996

93–118

ATGCTGTGTATGTAATAGAATGTTATATTC

ATCAAATTCACACACTGGCATG

3

178917428

178917512

118–121

GTGCACTCAGAATAAAAATTCTTTGTG

GCATCAGCATTTGACTTTACCTT

3

178921513

178921597

342–351

CTTATGTGACAATGTGAACACTCAA

ATAACCTTTGGAAATATAAATCTATATACTTCCT

3

178922329

178922413

376–381

TGAAATGTGTTTTATAATTTAGACTAGTGA

AGTTTATATTTCCCCATGCCAA

3

178927922

178928007

420

AATGGCTTTGAATCTTTGGCCA

ATTTGATCCAGTAACACCAATAGGG

3

178928042

178928117

449–464

GTACCTCATGGATTAGAAGATTTGCTG

TTTATGACAATAAAAACCTTACTTTATTTGGA

3

178928064

178928148

449–464

CTCAAAGCAATTTCTACACGAGA

TAGCACTTACCTGTGACTCC

3

178936049

178936132

539–551

TGTTTATTTTGTTTCTCCCACACA

TTCCATTTAACAGACAGAAGCAATT

3

178936959

178937043

558–566

TGGAAAAGCTCATTAACTTAACTGA

AAACACAAACTAGAGTCACACAC

3

178938884

178938968

713–728

CAGCATGCCAATCTCTTCATAAAT

ATGCAATGTCATCAAAAGATTGTAGTT

3

178951922

178952006

1002–1010

GCAAGAGGCTTTGGAGTATTTC

GGAAGATCCAATCCATTTTTG

3

178952041

178952123

1041–1049

GGAGGAAGTAGCGTGGCCG

TGGCGAGGGTCTGACGGGTA

14

105246515

105246609

AKT1

GGTTCCATCTACCTTTCCCC

GCGTCAAAGCCAGGGTG

16

68772172

68772252

CDH1

AATGTGAAAATTCCAGTGGCCA

GGGGCTTACGTCTAAGATTTCTTT

17

37880189

37880272

ERBB2

CCCATACCCTCTCAGCGTAC

CCAGAAGGCGGGAGACATAT

17

37880947

37881030

ERBB2

CAGCATGAAGTGCAAGAACG

GGCTAGTGGGCGCATGTA

6

152419891

152419976

ESR1

TTGGCTTTGGTGAGATCCATT

TCTCAAAGATTCCAGAAGTCAGGA

20

57484365

57484447

GNAS

TTTACTCAAAGAGGATGTCAAGTGGC

CTGCAGAGTGGGCGGCT

7

128587321

128587375

IRF5

TTTGTCCCGTCAAAGCCC

CCAATGCTGACACGAAGGAT

19

10600410

10600492

KEAP1

AATGGCCAAAGCACTGATGG

TGGGGCATAGTTAAAACCTGT

2

198266805

198266889

SF3B1

NGS (next generation sequencing) – высокопроизводительное секвенирование; ПЦР – полимеразная цепная реакция.

Последовательности праймеров указаны в направлении 5’→3’. Столбцы «Начало» и «Конец» обозначают координаты ПЦР-продукта на хромосоме 3 референсного генома человека сборки hg19

 

Анализ соматических мутаций гена PIK3CA методом мультиплексной аллель-специфичной полимеразной цепной реакции в режиме реального времени

Для детекции соматических мутаций гена PIK3CA методом мультиплексной аллель-специфичной ПЦР применяли набор реагентов HUM-PIK3CA-AS-1 производства ИХБФМ СО РАН. Использовали 10–50 нг ДНК на реакцию, амплификацию осуществляли в термоциклере CFX96 (Bio-Rad, США). Для каждого образца анализ проводили в двух повторах. Для анализа вычисляли dCqMUT по формуле:

dCqMUT = Cq-mutation - CqNORM,

где Cq-mutation – Cq, полученное при амплификации тестируемой ДНК с аллель-специфичным праймером для мутации, а CqNORM – Cq, полученное при амплификации контрольного однокопийного локуса ДНК.

Полученное значение dCqMUT сравнивали с критическими значениями, приведенными в инструкции к набору реагентов. В случае их меньшего значения делали заключение о наличии соответствующей мутации.

Статистический анализ

Для оценки статистической значимости различий распределения соматических мутаций использовали таблицы сопряженности и критерий хи-квадрат Пирсона в программе MedCalc V22.023.

Результаты

Выявление соматических мутаций гена PIK3CA в образцах ДНК рака молочной железы методом таргетного высокопроизводительного секвенирования

Выделена ДНК из 452 парафиновых блоков с операционным материалом больных HR+HER- РМЖ. По результатам анализа количества и качества ДНК, проведенного с помощью количественной амплификации двух локусов из ядерного генома – RPP30 и ALB (размеры ампликонов 68 и 105 п.н. соответственно), 21 образец оказался непригоден для таргетного NGS ввиду значительного уменьшения доли длинного ампликона ALB, что свидетельствует о деградации ДНК. Таким образом, NGS-анализ выполнен для 431 образца ДНК. При секвенировании добивались не менее чем 500-кратного прочтения анализируемых областей ДНК. В результате была выявлена 141 клинически значимая активирующая мутация в гене PIK3CA (32,7% образцов, 141/431):

  • H1047R – 69;
  • E545K – 32;
  • N345K – 12;
  • E542K – 9;
  • H1047L – 8;
  • C420R – 3;
  • G1049R – 2;
  • E545G – 1;
  • Q546L – 1;
  • Q546E – 1;
  • R88Q – 1;
  • R108H – 1;
  • M1004I – 1.

Частота обнаружения мутантного аллеля варьировала в пределах 15–65%. Наиболее часто встречались 6 мутаций – c.3140A>G p.His1047Arg (69), c.1633G>A p.Glu545Lys (32), c.1035T>A p.Asn345Lys (12), c.1624G>A p.Glu542Lys (9), c.3140A>T p.His1047Leu (8), Cys420Arg c.1258T>C (3). В сумме эти мутации составили 94,3% (133/141). В 5 случаях мы наблюдали 2 соматические мутации в одном образце с сопоставимой долей. В 3,5% случаев (15/431) выявлены клинически значимые соматические мутации в гене ESR1 – c.1613A>G p.Asp538Gly (7), c.1610A>C p.Tyr537Ser (6), c.1609T>A p.Tyr537Asn (1), c.1610A>G p.Tyr537Cys (1), вызывающие резистентность к гормональной терапии пациентов с РМЖ. Из них 6 мутаций обнаружены у пациентов, получавших неоадъювантную гормональную терапию. Таким образом, встречаемость активирующих соматических мутаций в гене ESR1 у нелеченых пациентов составила 2,3% (9/391). Не наблюдалось статистически значимой ассоциации между наличием мутации PIK3CA и ESR1 (4 ESR1m+/141PIK3Cm+ против 11 ESR1m+/290 PIK3Cm+, p > 0,8).

Выявление соматических мутаций гена PIK3CA в образцах ДНК рака молочной железы методом аллель-специфичной полимеразной цепной реакции

Использованный в работе набор реагентов HUM-PIK3CA-AS-1 позволяет с помощью мультиплексной аллель-специфичной ПЦР выявлять мутации c.3140A>G p.His1047Arg, c.1633G>A p.Glu545Lys, c.1035T>A p.Asn345Lys, c.1624G>A p.Glu542Lys, c.3140A>T p.His1047Leu, Cys420Arg c.1258T>C – наиболее частые из мутаций, определенных в нашей выборке методом таргетного NGS. Нами проведена валидация данного набора реагентов на анализируемой выборке образцов. В данном случае мы не отбраковывали 21 образец ДНК, которые оказались непригодны для NGS. Из них 17 образцов нормально прошли анализ, в них были дополнительно выявлены мутации c.3140A>G p.His1047Arg (4) и c.1633G>A p.Glu545Lys (1). Установлены все положительные по результатам NGS образцы ДНК, в том числе с двойной мутацией p.His1047Arg/p.Cys420Arg. Аллель-специфичная ПЦР также показала наличие 3 дополнительных образцов с мутацией. При детальном анализе данных NGS мы поняли, что эти образцы были отсеяны в биоинформационном анализе ввиду малого (менее 5%) количества прочтений с мутацией. В то же время чувствительность аллель-специфичной ПЦР была заявлена на уровне 2% мутантного аллеля. Таким образом, данный метод характеризуется 100% чувствительностью в выявлении 6 частых мутаций относительно «золотого стандарта» NGS.

Обсуждение

Полученные нами данные о спектре и частоте активирующих соматических мутаций в гене PIK3CA могут иметь важное значение для организации рутинного клинико-диагностического тестирования в России. Безусловно, NGS все шире внедряется в клиническую практику. Например, некоторые NGS-тесты, одобренные для клинического использования, такие как Foundation One CDx (Foundation Medicine Inc., США) или Guardant360 (Guardant Health, США), позволяют анализировать большинство или все экзоны гена PIK3CA. Весьма вероятно, что благодаря идентификации редких мутаций увеличится число пациентов, которым может быть рекомендована таргетная терапия. Вместе с тем важен потенциальный ответ пациентов с такими мутациями на терапию алпелисибом. Например, мутация N345K, которая составила 8,5% от всех мутаций PIK3CA в анализируемой нами выборке, не входит в зарегистрированный набор реагентов therascreen PKI3CA и не изучалась в клиническом исследовании SOLAR-1 [10]. Достаточно ли нам функциональных преклинических исследований, которые показывают ее явный онкогенный эффект? В любом случае функциональные характеристики и клиническое значение редких мутаций в пути PI3K еще предстоит выяснить. И хотя анализ in silico может предсказать влияние мутации на фолдинг и сохранение функции белка, необходимы более надежные доказательства биологических эффектов редких соматических мутаций в гене PIK3CA [2]. Все вышесказанное в значительной степени определяет целесообразность включения редких мутаций в схемы клинико-диагностического тестирования.

Ранее было показано существование двойных функциональных мутаций гена PIK3CA в 12% всех случаев с мутацией [15]. Двойные мутации вызывают большее повышение активности белка PI3K по сравнению с одиночными. Эти сложные мутации, по-видимому, определяют повышенную чувствительность опухолевых клеток к PI3K альфа-специфичным ингибиторам в доклинических моделях, а также у отдельных пациентов с РМЖ, получавших лечение в ранней фазе клинических исследований [15]. В нашей работе мы также детектировали двойные мутантные последовательности гена PIK3CA с сопоставимой частотой альтернативного аллеля (30–55%), но с более низкой частотой встречаемости – 2,1% (3/141).

Полученные нами данные демонстрируют относительно малый вклад редких мутаций в общий пул – всего 4,7%. Исследования, проведенные в других странах с участием представителей других этнических групп, показывают несколько большую частоту встречаемости редких мутаций PIK3CA [16]. Так, в широкомасштабном исследовании, проведенном в КНР с применением NGS, 5 частых мутаций гена PIK3CA составили 73% от общего количества: H1047R (35%), E545K (17%), E542K (11%), N345K (6%) и H1047L (4%) [16].

Наше исследование имеет явные ограничения: относительно небольшой объем анализируемой выборки и NGS только части гена PIK3CA. Возможно, расширение выборки увеличит как спектр, так и процент редких мутаций. Тем не менее данные нашего исследования пока вполне оправдывают применение для клинического тестирования более простых, чем NGS, методов. Из них сегодня самым распространенным является аллель-специфичная ПЦР, которая уже много лет используется в реальной клинической практике для обнаружения соматических мутаций. Для проведения аллель-специфичной ПЦР в режиме реального времени в клинико-диагностической лаборатории не требуется дорогостоящего оборудования, и исследование занимает меньше времени, чем секвенирование. В нашей работе аллель-специфичная ПЦР также показала бо`льшую эффективность анализа ДНК из парафиновых блоков: 4 невалидных образца ДНК против 21 невалидного образца для NGS. Это в значительной степени обусловлено минимизацией размеров ампликонов (менее 80 п.н.) и, как следствие, более эффективным использованием деградированной ДНК. За счет мультиплексирования возможно снизить стоимость и повысить удобство постановки, а стандартизация методики сокращает время получения результата, что позволяет рекомендовать данную методику для рутинного применения в клинико-диагностической лаборатории.

Использованная для секвенирования панель также позволила проанализировать область частых мутаций в гене ESR1 (536–538-й кодоны). Показано, что активирующие мутации этого гена в основном возникают в процессе прогрессирования опухоли и в результате гормональной терапии [17]. Частота первичных мутаций у нелеченых пациентов, описанная в литературе, составляет около 1% и значительно варьирует (12–55%) для метастатических опухолей [18, 19]. В нашем исследовании высокий процент (2,3%) мутаций резистентности у нелеченых пациентов может быть объяснен особенностями формирования выборки. Требуются дальнейшие исследования на более полно охарактеризованных образцах, полученных от больных РМЖ, для определения частоты встречаемости этих мутаций.

Заключение

В настоящей работе определен спектр соматических мутаций в гене PIK3CA при помощи таргетного NGS. Показано, что 6 частых мутаций составляют значительную долю и могут быть использованы для их выявления методом аллель-специфичной ПЦР, характеризующимся простотой и низкой стоимостью. Использование аллель-специфичной ПЦР позволяло проанализировать большее количество ДНК с низким качеством ввиду большей устойчивости теста. Применение набора HUM-PIK3CA-AS-1 показало полную конкордантность с таргетным NGS и может быть рекомендовано для использования в рутинной клинической практике с целью стратификации больных РМЖ для последующей таргетной терапии ингибиторами PIK3CA.

Дополнительная информация

Финансирование

Исследование поддержано в рамках государственного задания ИХБФМ СО РАН № 121031300045-2.

Конфликт интересов

Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Участие авторов

У.А. Боярских, Е.А. Храпов, И.П. Оскорбин, Е.Ю. Алексеенок – проведение экспериментов, редактирование текста; А.А. Кечин – биоинформационная обработка полученных данных, редактирование текста; А.В. Зюзюкина, Р.А. Зуков, Г.А. Авдиюк – сбор клинического материала, ведение больных, анализ историй болезни, редактирование текста; Н.Е. Кушлинский – концепция исследования, утверждение итогового варианта рукописи; М.Л. Филипенко – концепция и дизайн исследования, анализ полученных данных, написание текста. Все авторы прочли и одобрили финальную версию статьи перед публикацией, согласны нести ответственность за все аспекты работы и гарантируют, что ими надлежащим образом были рассмотрены и решены вопросы, связанные с точностью и добросовестностью всех частей работы.

×

Об авторах

Ульяна Александровна Боярских

Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук

Автор, ответственный за переписку.
Email: boyarskih.u@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-5660-2276

канд. биол. наук, науч. сотр. лаборатории фармакогеномики

Россия, 630090, г. Новосибирск, пр. Академика Лаврентьева, 8

Андрей Андреевич Кечин

Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук

Email: a.a.kechin@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-4822-0251

канд. биол. наук, науч. сотр. лаборатории фармакогеномики

Россия, 630090, г. Новосибирск, пр. Академика Лаврентьева, 8

Алена Владимировна Зюзюкина

КГБУЗ «Красноярский краевой клинический онкологический диспансер им. А.И. Крыжановского»; ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Email: alena-vz@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-6758-4800

канд. мед. наук, врач-онколог; доцент кафедры онкологии и лучевой терапии с курсом последипломного образования

Россия, 660133, г. Красноярск, ул. 1-я Смоленская, 16; 660022, г. Красноярск, ул. Партизана Железняка, 1

Евгений Александрович Храпов

Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук

Email: khrap80@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-0991-5349

мл. науч. сотр. лаборатории фармакогеномики

Россия, 630090, г. Новосибирск, пр. Академика Лаврентьева, 8

Игорь Петрович Оскорбин

Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук

Email: osc.igor@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-3754-5824

канд. биол. наук, науч. сотр. лаборатории фармакогеномики

Россия, 630090, г. Новосибирск, пр. Академика Лаврентьева, 8

Ефим Юрьевич Алесеенок

Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук

Email: alekseenokefim@gmail.com

ст. лаборант лаборатории фармакогеномики

Россия, 630090, г. Новосибирск, пр. Академика Лаврентьева, 8

Галина Александровна Авдиюк

ФГБОУ ВО «Новосибирский государственный медицинский университет» Минздрава России

Email: galasoft@bk.ru
ORCID iD: 0009-0005-0264-9377

канд. мед. наук, доцент кафедры акушерства и гинекологии лечебного факультета

Россия, 630091, г. Новосибирск, Красный пр., 52

Руслан Александрович Зуков

КГБУЗ «Красноярский краевой клинический онкологический диспансер им. А.И. Крыжановского»; ФГБОУ ВО «Красноярский государственный медицинский университет им. проф. В.Ф. Войно-Ясенецкого» Минздрава России

Email: zukov_rus@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-7210-3020

д-р мед. наук, профессор, главный врач; зав. кафедрой онкологии и лучевой терапии с курсом ПО

Россия, 660133, г. Красноярск, ул. 1-я Смоленская, 16; 660022, г. Красноярск, ул. Партизана Железняка, 1

Николай Евгеньевич Кушлинский

ФГБУ «Национальный медицинский исследовательский центр онкологии им. Н.Н. Блохина» Минздрава России

Email: biochimia@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-3898-4127

д-р мед. наук, профессор, академик РАН, научный руководитель клинико-диагностической лаборатории консультативно-диагностического центра

Россия, 115522, г. Москва, Каширское шоссе, 24

Максим Леонидович Филипенко

Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук

Email: mlfilipenko@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-8950-5368

д-р биол. наук, зав. лабораторией фармакогеномики

Россия, 630090, г. Новосибирск, пр. Академика Лаврентьева, 8

Список литературы

  1. Fruman DA, Chiu H, Hopkins BD, Bagrodia S, Cantley LC, Abraham RT. The PI3K pathway in human disease. Cell. 2017;170(4):605–635. doi: 10.1016/ j.cell.2017.07.029.
  2. Chen L, Yang L, Yao L, Kuang XY, Zuo WJ, Li S, Qiao F, Liu YR, Cao ZG, Zhou SL, Zhou XY, Yang WT, Shi JX, Huang W, Hu X, Shao ZM. Characterization of PIK3CA and PIK3R1 somatic mutations in Chinese breast cancer patients. Nat Commun. 2018;9(1):1–17. doi: 10.1038/s41467-018-03867-9.
  3. Samuels Y, Wang Z, Bardelli A, Silliman N, PtakJ, Szabo S, Yan H, Gazdar A, Powell SM, Riggins GJ, Willson JKV, Markowitz S, Kinzler KW, Vogelstein B, Velculescu VE. High frequency of mutations of the PIK3CA gene in human cancers. Science. 2004;304(5670):554. doi: 10.1126/science.1096502.
  4. Alqahtani A, Ayesh HSK, Halawani H. PIK3CA gene mutations in solid malignancies: Association with clinicopathological parameters and prognosis. Cancers (Basel). 2020;12(1):1–18. doi: 10.3390/cancers12010093.
  5. Jenkins ML, Ranga-Prasad H, Parson MAH, Harris NJ, Rathinaswamy MK, Burke JE. Oncogenic mutations of PIK3CA lead to increased membrane recruitment driven by reorientation of the ABD, p85 and C-terminus. Nat Commun. 2023;14(1):1–14. doi: 10.1038/s41467-023-35789-6.
  6. Yang J, Nie J, Ma X, Wei Y, Peng Y, Wei X. Targeting PI3K in cancer: mechanisms and advances in clinical trials. Mol Cancer. 2019;18(1):26. doi: 10.1186/s12943-019-0954-x.
  7. Belli С, Repetto M, Anand S, Porta C, Subbiah V, Curigliano G. The emerging role of PI3K inhibitors for solid tumour treatment and beyond. Br J Cancer. 2023;128(12):2150–2162. doi: 10.1038/s41416-023-02221-1.
  8. Faes S, Dormond O. PI3K and AKT: unfaithful partners in cancer. Int J Mol Sci. 2015;169(9):21138–21152. doi: 10.3390/ijms160921138.
  9. André F, Ciruelos E, Rubovszky G, Campone M, Loibl S, Rugo HS, Iwata H, Conte P, Mayer IA, Kaufman B, Yamashita T, Lu YS, Inoue K, Takahashi M, Pápai Z, Longin AS, Mills D, Wilke C, Hirawat S, Juric D; SOLAR-1 Study Group. Alpelisib for PIK3CA-mutated, hormone receptor – positive advanced breast cancer. N Engl J Med. 2019;380(20):1929–1940. doi: 10.1056/NEJMoa1813904.
  10. André F, Ciruelos EM, Juric D, Loibl S, Campone M, Mayer IA, Rubovszky G, Yamashita T, Kaufman B, Lu YS, Inoue K, Pápai Z, Takahashi M, Ghaznawi F, Mills D, Kaper M, Miller M, Conte PF, Iwata H, Rugo SH. Alpelisib plus fulvestrant for PIK3CA-mutated, hormone receptor-positive, human epidermal growth factor receptor-2-negative advanced breast cancer: final overall survival results from SOLAR-1. Ann Oncol. 2021;32(2):208–217. doi: 10.1016/j.annonc.2020.11.011.
  11. Kechin A, Borobova V, Boyarskikh U, Khrapov E, Subbotin S, Filipenko M. NGS-PrimerPlex: high-throughput primer design for multiplex polymerase chain reactions. PLoS Comput Biol. 2020;16(12):e1008468. doi: 10.1371/journal.pcbi.1008468.
  12. Boyarskikh UA, Gulyaeva LF, Avdalyan AM, Kechin AA, Khrapov EA, Lazareva DG, Kushlinskii NE, Melkonyan A, Arakelyan A, Filipenko LM. Spectrum of TP53 mutations in BRCA1/2 associated high-grade serous ovarian cancer. Front Oncol. 2020;10:1103. doi: 10.3389/fonc.2020.01103.
  13. Kechin A, Khrapov E, Boyarskikh U, Kel A, Filipenko M. BRCA-analyzer: Automatic workflow for processing NGS reads of BRCA1 and BRCA2 genes. Comput Biol Chem. 2018;77:297–306. doi: 10.1016/j.compbiolchem.2018.10.012.
  14. Tate JG, Bamford S, Jubb HC, Sondka Z, Beare DM, Bindal N, Boutselakis H, Cole CG, Creatore C, Dawson E, Fish P, Harsha B, Hathaway C, Jupe SC, Kok CY, Noble K, Ponting L, Ramshaw CC, Rye CE, Speedy HE, Stefancsik R, Thompson SL, Wang S, Ward S, Campbell PJ, Forbes SA. COSMIC: The Catalogue Of Somatic Mutations In Cancer. Nucleic Acids Res. 2019;47(D1):D941–D947. doi: 10.1093/nar/gky1015.
  15. Vasan N, Razavi P, Johnson JL, Shao H, Shah H, Antoine A, Ladewig E, Gorelick A, Lin TY, Toska E, Xu G, Kazmi A, Chang MT, Taylor BS, Dickler MN, Jhaveri K, Chandarlapaty S, Rabadan R, ReznikE, Smith ML, Sebra R, Schimmoller F, Wilson TR, Friedman LS, Cantley LC, Scaltriti M, Baselga J. Double PIK3CA mutations in CIS increase oncogenicity and sensitivity to PI3Kα inhibitors. Science. 2020;366(6466):714–723. doi: 10.1126/science.aaw9032.
  16. Huang Q, Zhou Y, Wang B, Zhao Y, Zhang F, Ding B. Mutational landscape of pan-cancer patients with PIK3CA alterations in Chinese population. BMC Med Genomics. 2022;15(1):146. doi: 10.1186/s12920-022-01297-7.
  17. Grinshpun A, Chen V, Sandusky ZM, Fanning SW, Jeselsohn R. ESR1 activating mutations: From structure to clinical application. Biochim Biophys Acta Rev Cancer. 2023;1878(1):188830. doi: 10.1016/j.bbcan.2022.188830.
  18. Dahlgren M, George AM, Brueffer C, Gladchuk S, Chen Y, Vallon-Christersson J, Hegardt C, Häkkinen J, Rydén L, Malmberg M, Larsson C, Gruvberger-Saal SK, Ehinger A, Loman N, Borg Å, Saal LH. Preexisting somatic mutations of estrogen receptor alpha (ESR1) in early-stage primary breast cancer. JNCI Cancer Spectr. 2021;5(2):pkab028. doi: 10.1093/jncics/pkab028.
  19. Kinslow CJ, Tang A, Chaudhary KR, Cheng SK. Prevalence of estrogen receptor alpha (ESR1) somatic mutations in breast cancer. JNCI Cancer Spectr. 2022;6(5):kac060. doi: 10.1093/jncics/pkac060.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать
2. Таблицы
Скачать (17KB)
Метаданные

© Боярских У.А., Кечин А.А., Зюзюкина А.В., Храпов Е.А., Оскорбин И.П., Алесеенок Е.Ю., Авдиюк Г.А., Зуков Р.А., Кушлинский Н.Е., Филипенко М.Л., 2024

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах