<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="other" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Almanac of Clinical Medicine</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Almanac of Clinical Medicine</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Альманах клинической медицины</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">2072-0505</issn><issn publication-format="electronic">2587-9294</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Moscow Regional Research and Clinical Institute (MONIKI)</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">939</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.18786/2072-0505-2018-46-8-778-783</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>ARTICLES</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>ОРИГИНАЛЬНЫЕ СТАТЬИ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject></subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">The use of the interference microscopy to study structural characteristics of cultured dermal fibroblasts</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Применение метода интерференционной микроскопии для изучения структурных характеристик дермальных фибробластов в культуре</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Nefedova</surname><given-names>I. F.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Нефедова</surname><given-names>И. Ф.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p><bold>Irina F. Nefedova – </bold>Research Fellow, Institute of Experimental Medicine and Biotechnology</p><p><italic>20 Gagarina ul., Samara, 443079</italic><italic/></p></bio><bio xml:lang="ru"><p><bold>Нефедова Ирина Феликсовна – </bold>научный сотрудник Института экспериментальной медицины и биотехнологий</p><p><italic>443079, г. Самара, ул. Гагарина, 20</italic></p></bio><email>bobrovka2012@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Rossinskaya</surname><given-names>V. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Россинская</surname><given-names>В. В.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p><bold>Viktoria V. Rossinskaya – </bold>MD, PhD, Associate Professor, Leading Research Fellow, Institute of Experimental Medicine and Biotechnology</p><p><italic>89 Chapaevskaya ul., Samara, 443099</italic></p></bio><bio xml:lang="ru"><p><bold>Россинская Виктория Викторовна – </bold>кандидат медицинских наук, доцент, ведущий научный сотрудник Института экспериментальной медицины и биотехнологий </p><p><italic>443099, г. Самара, ул. Чапаевская, 89</italic></p></bio><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Samara State Medical University</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2018-12-31" publication-format="electronic"><day>31</day><month>12</month><year>2018</year></pub-date><volume>46</volume><issue>8</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>778</fpage><lpage>783</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2018-12-31"><day>31</day><month>12</month><year>2018</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2018-12-31"><day>31</day><month>12</month><year>2018</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2018, Nefedova I.F., Rossinskaya V.V.</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2018, Нефедова И.Ф., Россинская В.В.</copyright-statement><copyright-year>2018</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">Nefedova I.F., Rossinskaya V.V.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Нефедова И.Ф., Россинская В.В.</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://creativecommons.org/licenses/by/4.0</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://almclinmed.ru/jour/article/view/939">https://almclinmed.ru/jour/article/view/939</self-uri><abstract xml:lang="en"><p><bold>Rationale: </bold>The use of electron, nuclear power and confocal microscopy for the screening of biologically active compounds, medical products and express diagnostics of some diseases at the cell level is associated with laborand time-consuming sample preparation, which cannot exclude potential measurement errors and artifacts. The modulation interference microscopy does not have these disadvantages; it allows for non-invasive studies of cell structures, imaging with nanometer resolution and analysis of the optical properties of an object.</p><p><bold>Aim: </bold>To assess the potential of the interference microscopy in the evaluation of morphofunctional characteristics of <italic>in vitro </italic>mitomycin conditioned cultured cell nuclei (dermal fibroblasts taken as a model).</p><p><bold>Materials and methods: </bold>Native culture of human dermal fibroblasts of the 6th passage, grown on glass with mirror coating in the cell culture laboratory of the Institute of Experimental Medicine and Biotechnology of Samara State Medical University (Russia), was examined with a modulation interference microscope MIM-340 (JSC PA UOMZ, Russia). Changes over time in the structural characteristics of dermal fbroblast nuclei conditioned with mitomycin were evaluated. The control group included fibroblasts cultured in the same conditions on glass with mirror coating without mitomycin. Imaging with MIM-340 was done at three hours, one and four days after adding the cytostatic. The control group was assessed at the same time points.</p><p><bold>Results: </bold>We have shown that the cell culture grown on dielectric glasses does not diﬀer in its morphofunctional characteristics from the culture grown on culture plastics. This proves the possibility to study the adhesive native culture using interference microscopy. We have found that the cells respond to a single mitomycin 0.04% exposure with a change to a globular shape and a sharp increase in the nuclear phase thickness (217.8 vs. 142.18 nm in the control group, p ≤ 0.05). Thereafter, the morphofunctional characteristics of the cells are restored, which is confirmed by the changes over time in the culture density, cell shape and size, and the phase thickness of the nucleus.</p><p><bold>Conclusion: </bold>The results obtained make it possible to recommend the method of modulation interference microscopy for evaluation of toxicity and biocompatibility of drugs, medical products and physical factors for diagnosis and treatment.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p><bold>Актуальность. </bold>Применение методов электронной, атомно-силовой и конфокальной микроскопии для скрининга биологически активных соединений, изделий медицинского назначения и экспресс-диагностики ряда заболеваний на клеточном уровне связано с трудоемкой и длительной пробоподготовкой, которая не исключает возможность погрешностей измерений и возникновения артефактов. Этих недостатков лишен метод модуляционной интерференционной микроскопии, позволяющий осуществлять неинвазивные исследования клеточной структуры, получать изображение с нанометровым разрешением и проводить анализ оптических свойств объекта.</p><p><bold>Цель – </bold>оценить возможность использования метода интерференционной микроскопии при изучении морфофункциональных характеристик ядер клеток в культуре на примере дермальных фибробластов при воздействии митомицином <italic>in vitro</italic>.</p><p><bold>Материал и методы. </bold>Нативную культуру дермальных фибробластов человека 6-го пассажа, выращенную на стекле с зеркальным напылением в лаборатории культуры клеток Института экспериментальной медицины и биотехнологий ФГБОУ ВО СамГМУ Минздрава России, исследовали при помощи модуляционного интерференционного микроскопа МИМ-340 (АО «ПО «УОМЗ», Россия). Оценивали динамику структурных характеристик ядер дермальных фибробластов при воздействии митомицином в условиях <italic>in vitro</italic>. Контрольную группу составила культура фибробластов, культивированная в аналогичных условиях на стеклах с зеркальным покрытием без добавления митомицина. Исследования на МИМ-340 проводили через 3 часа, 1 сутки и 4 суток после воздействия цитостатиком. Контрольную группу исследовали в те же сроки.</p><p><bold>Результаты. </bold>Показано, что культура клеток, выращенная на диэлектрических стеклах, по морфофункциональным характеристикам не отличается от культуры, выращенной на культуральном пластике. Тем самым доказана возможность изучения адгезивной культуры в нативном состоянии с использованием интерференционной микроскопии. Установлено, что на однократное воздействие митомицином 0,04% клетки отвечают изменением формы на шаровидную и резким увеличением фазовой толщины ядер (217,8 против 142,18 нм в контрольной группе, p ≤ 0,05). В последующие сроки происходит восстановление морфофункциональных характеристик клеток, что подтверждается динамикой изменений плотности культуры, формы и размеров клеток, а также фазовой толщины ядра.</p><p><bold>Заключение. </bold>Полученные результаты позволяют рекомендовать метод модуляционной интерференционной микроскопии для изучения токсичности и биосовместимости лекарственных средств, а также изделий медицинского назначения и физических факторов, используемых для диагностики и лечения.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>adhesive culture</kwd><kwd>modulation interference microscope</kwd><kwd>phase thickness</kwd><kwd>proliferation</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>адгезивная культура</kwd><kwd>модуляционный интерференционный микроскоп</kwd><kwd>фазовая толщина</kwd><kwd>пролиферация</kwd></kwd-group><funding-group/></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>1. Нефедова ИФ, Россинская ВВ, Волова ЛТ, Болтовская ВВ, Кулагина ЛН. Использование возможностей интерференционной микроскопии для изучения культуры адгезивных клеток. Современные проблемы науки и образования. 2017;(5) [электронный ресурс]. Доступно на: https://scienceeducation.ru/ru/article/view?id=26800 (дата обращения: 29.09.2017).</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>2. Popescu G, Park Y. Quantitative phase imaging in biomedicine. J Biomed Opt. 2015;20(11): 111201. doi: 10.1117/1.JBO.20.11.111201.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>3. Лопарев АВ, Игнатьев ПС, Индукаев КВ, Осипов ПА, Мазалов ИН, Козырев АВ. Высокоскоростной модуляционный интерференционный микроскоп для медико-биологических исследований. Измерительная техника. 2009;(11):60–4.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>4. Бункин НФ, Суязов HB, Шкирин AB, Игнатьев ПС, Индукаев КВ. Определение микроструктуры газовых пузырьков в глубоко очищенной воде по измерениям элементов матрицы рассеяния лазерного излучения. Квантовая электроника. 2009;39(4):367–81. doi: 10.1070/QE2009v039n04ABEH013892.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>5. Yang SA, Yoon J, Kim K, Park Y. Measurements of morphological and biophysical alterations in individual neuron cells associated with early neurotoxic eﬀects in Parkinson's disease. Cytometry A. 2017;91(5):510–8. doi: 10.1002/cyto.a.23110.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>6. Василенко ИА, Кардашова ЗЗ, Тычинский ВП, Вишенская ТВ, Лифенко РА, Валов АЛ, Иванюта ИВ, Агаджанян БЯ. Клеточная диагностика: возможности витальной компьютерной микроскопии. Вестник последипломного медицинского образования. 2009;(3–4):64–8.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>7. Иванова ЕВ, Щербакова ЭГ, Рабинович ОФ, Барсуков АА, Ежова ЕГ, Василенко ИА. Современные подходы к патогенетической терапии плоского лишая слизистой оболочки рта. Стоматология. 2005;84(5):28–31.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>8. Evans AA, Bhaduri B, Popescu G, Levine AJ. Geometric localization of thermal ﬂuctuations in red blood cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 2017;114(11):2865–70. doi: 10.1073/pnas.1613204114.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>9. Арсенюк АЮ, Павлова ИБ, Игнатьев ПС. Исследование процесса L-трансформации в популяции сальмонелл методами электронной лазерной интерференционной микроскопии. Сельскохозяйственная биология. 2013;48(6):55–60. doi: 10.15389/agrobiology.2013.6.55rus.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>10. Тычинский ВП, Николаев ЮА, Лисовский ВВ, Кретушев АВ, Вышенская ТВ, Мулюкин АЛ, Сузина НА, Дуда ВИ, Эль-Регистан ГИ. Исследования ранних стадий прорастания спор Bacillus licheniformis методом динамической фазовой микроскопии. Микробиология. 2007;76(2):191–9.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>11. Власова ЕА, Василенко ИА, Суслов ВП, Пашкин ИН. Динамика морфометрических показателей тромбоцитов периферической крови как критерий оценки тромбогенности диализных мембран. Урология. 2011;(2): 36–41.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>12. Кулагина ЛН, Болтовская ВВ, Долгушкин ДА, Нефедова ИФ, Россинская ВВ, авторы; ФГБОУ ВО СамГМУ Минздрава России, патентообладатель. Способ обработки предметных стекол с зеркальным покрытием. Пат. 2639768 Рос. Федерация. Опубл. 22.12.2017.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>13. Tychinsky V, Kretushev AV, Klemyashov IV, Zverzhkhovskiy VD, Vyshenskaya TV, Shtil AA. Quantitative phase imaging of living cells: application of the phase volume and area functions to the analysis of "nucleolar stress". J Biomed Opt. 2013;18(11):111413. doi: 10.1117/1.JBO.18.11.111413.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
