Serum cytokine profile in patients with pulmonary tuberculosis and comorbid chronic obstructive pulmonary disease: A comparative study and analysis of association with bacterial shedding

Full Text

Abstract

Background: The combination of chronic obstructive pulmonary disease (COPD) and tuberculosis forms a specific clinical and pathogenetic phenotype. Studying the cytokine profile in comorbid pathology is necessary to understand the mechanisms of mutual aggravation of disease course.

Aim: To assess the strength of association between serum levels of key cytokines and clinically significant manifestations of comorbid COPD and tuberculosis, with a primary focus on the presence of bacterial shedding.

Methods: A single-center observational comparative cross-sectional study was conducted. From December 2024 to March 2026, clinical and laboratory parameters, serum cytokine levels, and the presence of Mycobacterium tuberculosis in sputum were evaluated in men aged 45 years and older followed up in pulmonology and phthisiology departments for COPD, pulmonary tuberculosis, or their combination, as well as in healthy volunteers in the control group. Serum levels of interleukin (IL)-1β, IL-6, IL-8, IL-10, and tumor necrosis factor-α (TNF-α) were measured by enzyme-linked immunosorbent assay. Mycobacterium tuberculosis (MTB) isolation was assessed by sputum smear microscopy, fluorescent microscopy and/or sputum culture. Patients with a positive result were classified as MTB+, while those without confirmed bacterial shedding were classified as MTB-.

Results: Data from 209 men were analyzed: 42 healthy volunteers (control group); 63 patients with COPD without active tuberculosis (COPD group); 51 patients with active pulmonary tuberculosis without comorbid COPD (TB group); and 53 patients with both COPD and active pulmonary tuberculosis (COPD + TB group). Median age across groups ranged from 64 to 69 years (p = 0.137). The groups differed significantly in smoking history, forced expiratory volume in 1 second (FEV1), oxygen saturation (SpO2), and markers of systemic inflammation. The comorbid group (COPD + TB) had the highest smoking history (median 31 pack-years), lowest FEV1 (41.3% of predicted), highest C-reactive protein (32.7 mg/L), and lowest SpO2 (90%) (all p < 0.001). Levels of all five cytokines increased from the control group to the comorbid group (COPD + TB): median IL-6 from 6.3 to 51.7 pg/mL, IL-1β from 3.1 to 27.1 pg/mL, IL-8 from 18.4 to 66.0 pg/mL (all p < 0.001). In bacterial shedders (MTB+, n = 59), cytokine levels were higher than in patients without bacterial shedding (MTB-, n = 45): IL-1β, 32.9 vs 13.2 pg/mL; IL-10, 29.1 vs 13.4 pg/mL; TNF-α, 30.0 vs 15.3 pg/mL (all p < 0.001). The best discriminative ability for bacterial shedding was shown by IL-10 (AUC = 0.924) and TNF-α (AUC = 0.923). A multivariate logistic model including IL-1β, IL-6, TNF-α and the IL-6/IL-10 ratio demonstrated an in-sample AUC of 0.991 (95% confidence interval 0.979–1.000), and 0.974 (SD 0.009) after cross-validation.

Conclusion: Serum cytokine levels are strongly associated with bacterial shedding. The cytokine profile may be considered as a research tool for stratifying the inflammatory phenotype in combined COPD and pulmonary tuberculosis.

Full Text

Туберкулез и хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ) относятся к важнейшим проблемам пульмонологии и фтизиатрии. У 30–40% больных туберкулезом легких наблюдается сопутствующая ХОБЛ; такое сочетание ассоциировано с замедленной конверсией мокроты, ускоренным прогрессированием бронхообструктивного синдрома и повышенной летальностью [1–6].

Общими патогенетическими звеньями ХОБЛ и туберкулеза выступают хроническое воспаление с нейтрофильным паттерном, окислительный стресс и нарушения иммунного ответа [7–9]. Ключевую роль в патогенезе обоих заболеваний играют провоспалительные цитокины: интерлейкин (ИЛ) 1β инициирует ранний воспалительный ответ через инфламмасому NLRP3, ИЛ-6 индуцирует синтез белков острой фазы, ИЛ-8 служит ключевым хемоаттрактантом нейтрофилов, фактор некроза опухоли альфа (ФНО-α) необходим для формирования туберкулезной гранулемы, противовоспалительный ИЛ-10 ограничивает воспалительный ответ, однако его чрезмерное повышение может способствовать персистенции микобактерий [10–13].

Несмотря на значительное количество исследований цитокинового профиля при ХОБЛ и туберкулезе по отдельности [14–17], данные о цитокиновой регуляции при их сочетании, особенно об ассоциации с активностью туберкулезного процесса, остаются ограниченными.

Цель исследования – оценить силу ассоциации уровней ключевых сывороточных цитокинов с клинически значимыми проявлениями коморбидной патологии ХОБЛ и туберкулеза, прежде всего с наличием бактериовыделения.

Материал и методы

Проведено одноцентровое наблюдательное сравнительное одномоментное исследование, в которое были включены мужчины 45 лет и старше, наблюдавшиеся в клинических подразделениях фтизиатрического и пульмонологического профиля. У всех участников исследования однократно оценивали клинико-лабораторные показатели, уровни цитокинов в сыворотке крови и наличие Mycobacterium tuberculosis в мокроте с последующим сравнением групп и анализом ассоциации уровней цитокинов с бактериовыделением.

Дизайн исследования

Исследование имело наблюдательный характер: участникам не назначались лекарственные препараты и лечебные вмешательства в интересах настоящей работы, а тактика ведения пациентов не изменялась. В рамках протокола однократно выполняли забор венозной крови для исследовательского определения сывороточных цитокинов; остальные клинико-лабораторные и микробиологические данные анализировали по результатам обследования, выполненного при включении. Исследование было одномоментным, по числу изучаемых популяций – многогрупповым сравнительным. Протокол исследования не был предварительно опубликован и не регистрировался в международных регистрах клинических исследований, поскольку исследование носило наблюдательный характер и не являлось клиническим испытанием.

Условия проведения исследования

Исследование проведено в ФГБОУ ВО РязГМУ Минздрава России с участием пациентов, обследованных на базах практической подготовки фтизиатрического и пульмонологического профиля. Набор участников осуществлялся среди пациентов, проходивших обследование и лечение по поводу ХОБЛ, туберкулеза легких или их сочетания, а также среди здоровых добровольцев, составивших контрольную группу. Специфических социальных, экономических или культурных условий набора, способных существенно ограничить внешнюю обобщаемость результатов, не предусматривалось; вместе с тем одноцентровый характер исследования и включение только мужчин 45 лет и старше учитывались при интерпретации результатов. Календарный период включения участников в исследование – с 06.12.2024 по 30.03.2026.

Изучаемые популяции и критерии соответствия

В исследовании изучались четыре предварительно определенные популяции: здоровые добровольцы контрольной группы; пациенты с ХОБЛ без активного туберкулеза (группа ХОБЛ); пациенты с активным туберкулезом легких без сопутствующей ХОБЛ (группа ТБ); пациенты с сочетанием ХОБЛ и активного туберкулеза легких (группа ХОБЛ + ТБ). Общими критериями включения были мужской пол, возраст 45 лет и старше, наличие информированного добровольного согласия на участие в исследовании и возможность выполнения предусмотренного обследования.

Критерием включения в группу ХОБЛ было наличие диагноза «хроническая обструктивная болезнь легких», установленного на основании клинических данных и постбронходилатационного отношения ОФВ1/ФЖЕЛ (объем форсированного выдоха за первую секунду / функциональная жизненная емкость легких) < 0,70 в соответствии с подходами GOLD (англ. Global Initiative for Chronic Obstructive Lung Disease – Глобальная инициатива по ХОБЛ)12. Стадию ХОБЛ определяли по величине ОФВ1 в процентах от должного значения. Критерием включения в группу ТБ было наличие активного туберкулеза легких, установленного в соответствии с действующими клиническими рекомендациями3 с учетом клинических, рентгенологических и микробиологических данных. Критерием включения в группу ХОБЛ + ТБ было одновременное соответствие критериям ХОБЛ и активного туберкулеза легких. Контрольную группу составили здоровые добровольцы без клинических признаков активного туберкулеза и диагностированной ХОБЛ.

Критериями невключения для всех групп были онкологические заболевания, системные заболевания соединительной ткани, ВИЧ-инфекция, активные инфекции иной локализации, прием системных глюкокортикостероидов или иммунодепрессантов в течение 30 дней до забора крови, тяжелые заболевания печени и почек. Наличие критериев невключения оценивали по данным медицинской документации, анамнеза, клинического осмотра и результатов стандартного лабораторно-инструментального обследования. Выборку формировали последовательным способом: в исследование включали всех лиц, соответствовавших критериям отбора в период проведения работы.

Описание медицинского вмешательства

В рамках настоящего исследования медицинское вмешательство ограничивалось однократным забором венозной крови для определения сывороточных цитокинов. Данная процедура выполнялась после получения информированного добровольного согласия и не влияла на выбор лечебной тактики. Лечение ХОБЛ и активного туберкулеза легких назначалось лечащими врачами в соответствии с действующими клиническими рекомендациями123 и не изменялось в рамках протокола исследования.

Методы оценки показателей

Диагноз ХОБЛ устанавливали на основании клинических данных и результатов спирометрии с определением постбронходилатационного отношения ОФВ1/ФЖЕЛ. Тяжесть бронхиальной обструкции оценивали по ОФВ1 в процентах от должного значения. Диагноз активного туберкулеза легких устанавливали в соответствии с действующими клиническими рекомендациями3 на основании совокупности клинических, лучевых и микробиологических данных. Выделение микобактерий туберкулеза (МБТ) оценивали методами микроскопии мазка мокроты, люминесцентной микроскопии и/или культурального исследования мокроты; пациентов с положительным микробиологическим результатом относили к категории МБТ+, пациентов без подтвержденного бактериовыделения – к категории МБТ-.

Сыворотку крови получали из венозной крови, забираемой утром натощак, путем центрифугирования при 3000 об/мин в течение 15 минут с последующим хранением при температуре -80 °C до момента анализа. Уровни ИЛ-1β, ИЛ-6, ИЛ-8, ИЛ-10 и ФНО-α определяли методом твердофазного иммуноферментного анализа с использованием коммерческих наборов АО «Вектор-Бест» (Россия) согласно инструкциям производителя.

В клинико-лабораторный анализ включали возраст, индекс массы тела, стаж курения (пачко-лет), ОФВ1 в процентах от должного, уровень С-реактивного белка (СРБ), скорость оседания эритроцитов (СОЭ), количество лейкоцитов, альбумин, насыщение гемоглобина артериальной крови кислородом (SpO2) по данным пульсоксиметрии и нейтрофильно-лимфоцитарный индекс (НЛИ) – отношение абсолютного числа нейтрофилов к абсолютному числу лимфоцитов. Для оценки баланса провоспалительного и противовоспалительного цитокинового ответа дополнительно рассчитывали соотношение ИЛ-6/ИЛ-10.

Этическая экспертиза

Протокол исследования был рассмотрен и одобрен локальным этическим комитетом ФГБОУ ВО РязГМУ Минздрава России (выписка из протокола заседания № 4 от 06.12.2024). Исследование выполнено в соответствии с этическими принципами проведения биомедицинских исследований с участием человека, отраженными в Хельсинкской декларации Всемирной медицинской ассоциации. От всех лиц, включенных в исследование, получено информированное добровольное согласие на участие. Конфиденциальность персональных данных обеспечивалась использованием обезличенных кодов.

Статистический анализ

Статистическая обработка проведена в среде R 4.3.0 с использованием пакетов dplyr, ggplot2, pROC [18]. Описательная статистика для количественных переменных – медиана и межквартильный размах (Me [Q25; Q75]), для качественных – абсолютные и относительные частоты. Размер выборки предварительно не рассчитывали: в исследование последовательно включали всех пациентов, соответствовавших критериям отбора в период проведения работы. Соответствие количественных переменных нормальному распределению проверяли с помощью критерия Шапиро – Уилка; поскольку для большинства показателей, включая все изученные цитокины, распределение значимо отличалось от нормального (p < 0,05), использовали непараметрические методы. Сравнение количественных показателей между группами проводили с помощью критерия Краскела – Уоллиса с попарным апостериорным сравнением методом Манна – Уитни и поправкой Бонферрони (выполняли при статистически значимом значении р по критерию Краскела – Уоллиса); качественных признаков – с использованием точного критерия Фишера; для таблиц сопряженности размером более 2×2 – точного критерия Фишера – Фримена – Холтона. Корреляционный анализ выполнен методом Спирмена. Силу корреляционной связи интерпретировали по шкале Чеддока: |ρ| 0,1–0,3 – слабая, 0,3–0,5 – умеренная, 0,5–0,7 – заметная, 0,7–0,9 – высокая, 0,9–1,0 – весьма высокая.

Дискриминационную способность цитокинов в разграничении пациентов по микробиологическому статусу оценивали методом ROC-анализа с расчетом площади под кривой (англ. area under the curve, AUC), 95% доверительных интервалов (ДИ) методом DeLong и пороговых значений по индексу Юдена. Многофакторное моделирование выполняли с помощью логистической регрессии; предикторы отбирали с учетом результатов однофакторного ROC-анализа (наибольшие значения AUC) и их клинико-патогенетической значимости, без применения автоматических пошаговых процедур; для каждого предиктора рассчитывали отношение шансов (ОШ) и 95% ДИ, а отсутствие мультиколлинеарности подтверждали по коэффициенту инфляции дисперсии (англ. variance inflation factor, VIF). Для оценки робастности применяли бутстрэп-коррекцию на оптимизм (1000 итераций) и повторную стратифицированную по исходу 5-кратную кросс-валидацию (200 повторений; AUC усредняли по фолдам) [19]. Калибровку модели оценивали по Brier score, а также по калибровочному графику и калибровочным наклону и пересечению [20]. Уровнем статистической значимости считали p < 0,05. Для воспроизводимости результатов кросс-валидации и бутстрэп-процедуры использовали фиксированное начальное значение генератора псевдослучайных чисел (seed = 2024).

Результаты

В исследование включено 209 мужчин в возрасте 45 лет и старше: 1) контрольная группа здоровых добровольцев (n = 42); 2) больные ХОБЛ без активного туберкулеза (n = 63); 3) больные туберкулезом легких без сопутствующей ХОБЛ (n = 51); 4) пациенты с сочетанием ХОБЛ и активного туберкулеза легких (n = 53). Группы статистически значимо не различались по возрасту (медианы 64–69 лет; p = 0,137, критерий Краскела – Уоллиса); по полу выборка была однородной в соответствии с дизайном исследования (все участники – мужчины). Закономерно различались показатели стажа курения, спирометрии и системного воспаления (табл. 1).

 

Таблица 1. Клинико-лабораторная характеристика групп исследования

Параметр

Группа исследования

Значение p (КУ)

Попарные сравнения

Контроль, n = 42 (1)

ХОБЛ, n = 63 (2)

ТБ, n = 51 (3)

ХОБЛ + ТБ, n = 53 (4)

Возраст, лет

64 [55; 69]

67 [60; 73]

67 [59; 71]

69 [60; 75]

0,137

p1–2 = 0,716

p1–3 = 1,000

p1–4 = 0,262

p2–3 = 1,000

p2–4 = 1,000

p3–4 = 0,880

ИМТ, кг/м2

24,9 [22, 5; 28, 0]

24,4 [22, 8; 27, 1]

20,2 [18, 7; 21, 8]

21,7 [19, 1; 24, 3]

< 0,001

p1–2 = 1,000

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 < 0,001

p2–4 < 0,001

p3–4 = 0,209

Стаж курения, пачко-лет

7 [3; 9]

26 [20; 35]

14 [10; 18]

31 [23; 38]

< 0,001

p1–2 < 0,001

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 < 0,001

p2–4 = 0,109

p3–4 < 0,001

ОФВ1, % от должного

95,2 [91, 9; 100, 3]

57,0 [41, 0; 65, 7]

80,3 [75, 2; 89, 3]

41,3 [32, 3; 60, 2]

< 0,001

p1–2 < 0,001

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 < 0,001

p2–4 = 0,108

p3–4 < 0,001

СРБ, мг/л

10,6 [4, 7; 17, 8]

19,8 [11, 7; 27, 2]

24,8 [14, 9; 30, 1]

32,7 [24, 8; 37, 5]

< 0,001

p1–2 = 0,002

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 = 0,795

p2–4 < 0,001

p3–4 < 0,001

СОЭ, мм/ч

12,5 [7, 2; 18]

23 [15; 29]

23 [18, 5; 27]

32 [23; 37]

< 0,001

p1–2 < 0,001

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 = 1,000

p2–4 < 0,001

p3–4 = 0,003

Лейкоциты, × 109

7,7 [6, 0; 8, 3]

8,9 [7, 4; 9, 9]

9,2 [8, 1; 10, 6]

10,8 [8, 9; 11, 5]

< 0,001

p1–2 = 0,005

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 = 0,335

p2–4 < 0,001

p3–4 = 0,074

НЛИ

1,8 [1, 7; 2, 0]

2,5 [2, 0; 3, 0]

2,7 [2, 3; 3, 1]

3,5 [2, 6; 4, 6]

< 0,001

p1–2 < 0,001

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 = 1,000

p2–4 < 0,001

p3–4 < 0,001

Альбумин, г/л

43,7 [41, 4; 45, 0]

39,1 [36, 7; 40, 7]

37,6 [35, 2; 40, 7]

35,8 [33, 3; 37, 9]

< 0,001

p1–2 < 0,001

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 = 1,000

p2–4 < 0,001

p3–4 = 0,021

SpO2, %

97 [96; 98]

93 [91; 94, 5]

92 [91; 94]

90 [88; 92]

< 0,001

p1–2 < 0,001

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 = 0,656

p2–4 < 0,001

p3–4 < 0,001

SpO2 – показатель насыщения гемоглобина артериальной крови кислородом, ИМТ – индекс массы тела, КУ – критерий Краскела – Уоллиса, НЛИ – нейтрофильно-лимфоцитарный индекс, ОФВ1 – объем форсированного выдоха за первую секунду, СОЭ – скорость оседания эритроцитов, СРБ – С-реактивный белок, ТБ – туберкулез, ХОБЛ – хроническая обструктивная болезнь легких

Данные представлены в виде медианы и межквартильного размаха (Me [Q25; Q75]). В столбце «Попарные сравнения» приведены значения p всех шести попарных апостериорных сравнений, выполненных с помощью критерия Манна – Уитни с поправкой Бонферрони

 

Стаж курения достигал максимума в группе ХОБЛ + ТБ (медиана 31 пачко-год), что согласуется с ролью курения как общего фактора риска. Нутритивный статус был снижен у пациентов с туберкулезом: индекс массы тела был значимо ниже в группах ТБ и ХОБЛ + ТБ, чем в группе контроля и группе ХОБЛ (попарные сравнения: p < 0,001), при этом группы ТБ и ХОБЛ + ТБ между собой не различались (p = 0,209), а наименьшая медиана зарегистрирована в группе ТБ (20,2 кг/м2). Уровень альбумина был минимальным при коморбидной патологии (35,8 г/л) и значимо ниже, чем во всех остальных группах, включая группу ТБ (p = 0,021). Показатели системного воспаления (СРБ, СОЭ, лейкоциты, НЛИ) возрастали от группы контроля к группе коморбидной патологии, при этом группы ХОБЛ и ТБ между собой статистически значимо не различались (p > 0,05). В группе ХОБЛ + ТБ уровни СРБ, СОЭ и НЛИ были значимо выше, чем в каждой из остальных групп (попарные сравнения: p < 0,05; см. табл. 1); содержание лейкоцитов в группе ХОБЛ + ТБ значимо превышало значения в группе контроля и группе ХОБЛ, но не отличалось от группы ТБ (p = 0,074). Снижение SpO2 было максимальным при сочетанной патологии (медиана 90%) и значимо более выраженным, чем в группах ХОБЛ и ТБ (p < 0,001). Распределение по стадиям GOLD в группе ХОБЛ было следующим: GOLD I – 7 (11,1%), GOLD II – 34 (54,0%), GOLD III – 15 (23,8%), GOLD IV – 7 (11,1%); в группе ХОБЛ + ТБ: GOLD I – 6 (11,3%), GOLD II – 16 (30,2%), GOLD III – 24 (45,3%), GOLD IV – 7 (13,2%), то есть при коморбидной патологии преобладали более тяжелые стадии (p = 0,046, точный критерий Фишера – Фримена – Холтона). Бактериовыделение установлено у 31 (60,8%) пациента группы ТБ и у 28 (52,8%) – группы ХОБЛ + ТБ.

Уровни всех изученных цитокинов значимо различались между группами (p < 0,001) (табл. 2, рис. 1). Прослеживался отчетливый градиент возрастания концентраций провоспалительных цитокинов от группы здоровых добровольцев к группе пациентов с коморбидной патологией. Группа ХОБЛ + ТБ характеризовалась максимальными уровнями ИЛ-1β (в 8,7 раза выше контроля), ИЛ-6 (в 8,2 раза выше) и ИЛ-8 (в 3,6 раза выше). Уровни ИЛ-10 и ФНО-α в группах ТБ и ХОБЛ + ТБ значимо не различались (p > 0,05).

 

Таблица 2. Уровни цитокинов сыворотки крови в группах исследования

Цитокин

Группа исследования

Значение p (КУ)

Попарные сравнения

Контроль, n = 42 (1)

ХОБЛ, n = 63 (2)

ТБ, n = 51 (3)

ХОБЛ + ТБ, n = 53 (4)

ИЛ-1β, пг/мл

3,1 [2, 5; 3, 6]

12,8 [8, 4; 15, 4]

17,8 [8, 8; 27, 8]

27,1 [21, 0; 43, 4]

< 0,001

p1–2 < 0,001

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 = 0,009

p2–4 < 0,001

p3–4 < 0,001

ИЛ-6, пг/мл

6,3 [4, 0; 9, 7]

20,8 [14, 5; 25, 4]

34,1 [20, 4; 58, 1]

51,7 [36, 5; 68, 2]

< 0,001

p1–2 < 0,001

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 < 0,001

p2–4 < 0,001

p3–4 = 0,006

ИЛ-8, пг/мл

18,4 [16, 7; 19, 7]

42,1 [35, 8; 48, 5]

40,3 [35, 7; 51, 6]

66,0 [54, 9; 83, 2]

< 0,001

p1–2 < 0,001

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 = 1,000

p2–4 < 0,001

p3–4 < 0,001

ИЛ-10, пг/мл

3,9 [3, 2; 4, 9]

8,1 [6, 3; 9, 9]

19,4 [11, 9; 28, 5]

21,5 [14, 4; 30, 1]

< 0,001

p1–2 < 0,001

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 < 0,001

p2–4 < 0,001

p3–4 = 1,000

ФНО-α, пг/мл

3,8 [3, 3; 4, 8]

15,4 [11, 0; 17, 8]

21,1 [13, 7; 33, 6]

21,3 [17, 8; 33, 6]

< 0,001

p1–2 < 0,001

p1–3 < 0,001

p1–4 < 0,001

p2–3 = 0,002

p2–4 < 0,001

p3–4 = 1,000

ИЛ-6/ИЛ-10

1,5 [1, 0; 2, 4]

2,5 [1, 8; 3, 7]

1,8 [1, 4; 2, 3]

2,4 [1, 9; 3, 0]

< 0,001

p1–2 = 0,002

p1–3 = 1,000

p1–4 = 0,006

p2–3 = 0,005

p2–4 = 1,000

p3–4 = 0,012

ИЛ – интерлейкин, КУ – критерий Краскела – Уоллиса, ТБ – туберкулез, ФНО-α – фактор некроза опухоли альфа, ХОБЛ – хроническая обструктивная болезнь легких

Данные представлены в виде медианы и межквартильного размаха (Me [Q25; Q75]). В столбце «Попарные сравнения» приведены значения p всех шести попарных апостериорных сравнений, выполненных с помощью критерия Манна – Уитни с поправкой Бонферрони

 

Рис. 1. Распределение уровней сывороточных цитокинов в группах исследования: А – интерлейкин-1β; Б – интерлейкин-6; В – интерлейкин-8; Г – интерлейкин-10; Д – фактор некроза опухоли альфа. Межгрупповые различия оценивали, используя критерий Краскела – Уоллиса, с последующими попарными сравнениями с помощью критерия Манна – Уитни с поправкой Бонферрони; значения p приведены в табл. 2. ТБ – туберкулез, ХОБЛ – хроническая обструктивная болезнь легких

 

Установлены статистически значимые корреляции уровней цитокинов с показателями системного воспаления и тяжести бронхолегочной патологии (табл. 3). Сила связи по шкале Чеддока варьировала от умеренной до высокой (|ρ| от 0,33 до 0,71). Все 30 пар «цитокин – клинико-лабораторный параметр» оказались статистически значимыми (p < 0,001). Наиболее выраженные (заметной силы по шкале Чеддока) обратные корреляции с ОФВ1 выявлены для ИЛ-8 (ρ = -0,67) и ИЛ-1β (ρ = -0,52). Установлена прямая корреляция ИЛ-6 с СРБ (ρ = +0,71, высокой силы).

 

Таблица 3. Коэффициенты ранговой корреляции Спирмена (ρ) между уровнями цитокинов и клинико-лабораторными показателями

Цитокин

ОФВ1

СРБ

SpO2

Альбумин

НЛИ

СОЭ

ИЛ-1β

-0,52

+0,59

-0,71

-0,64

+0,67

+0,57

ИЛ-6

-0,50

+0,71

-0,70

-0,63

+0,64

+0,56

ИЛ-8

-0,67

+0,51

-0,68

-0,58

+0,61

+0,55

ИЛ-10

-0,33

+0,48

-0,66

-0,59

+0,58

+0,50

ФНО-α

-0,49

+0,56

-0,70

-0,66

+0,63

+0,52

SpO2 – показатель насыщения гемоглобина артериальной крови кислородом, ИЛ – интерлейкин, НЛИ – нейтрофильно-лимфоцитарный индекс, ОФВ1 – объем форсированного выдоха за первую секунду, СОЭ – скорость оседания эритроцитов, СРБ – С-реактивный белок, ФНО-α – фактор некроза опухоли альфа

p < 0,001 для всех сравнений

 

При анализе уровней цитокинов в зависимости от стадии GOLD (рис. 2) (объединенные группы ХОБЛ и ХОБЛ + ТБ, n = 116) выявлена значимая положительная динамика ИЛ-1β (ρ = 0,35, p < 0,001), ИЛ-6 (ρ = 0,35, p < 0,001), ИЛ-8 (ρ = 0,39, p < 0,001) и ФНО-α (ρ = 0,36, p < 0,001). Парадоксальной находкой стало отсутствие значимой динамики ИЛ-10 (ρ = 0,11, p = 0,232). Поскольку наличие активного туберкулеза само по себе ассоциировано с повышением уровней цитокинов, для учета возможного влияния статуса заболевания рассчитаны частные коэффициенты ранговой корреляции Спирмена с поправкой на групповую принадлежность (ХОБЛ или ХОБЛ + ТБ): связь стадии GOLD с уровнями провоспалительных цитокинов сохранялась (частный ρ варьировал от 0,32 до 0,36; p < 0,001 для ИЛ-1β, ИЛ-6, ИЛ-8 и ФНО-α), тогда как для ИЛ-10 связь оставалась статистически незначимой (частный ρ = -0,05; p = 0,629).

 

Рис. 2. Уровни сывороточных цитокинов в зависимости от стадии хронической обструктивной болезни легких (ХОБЛ) по GOLD: А – интерлейкин-1β; Б – интерлейкин-6; В – интерлейкин-8; Г – интерлейкин-10; Д – фактор некроза опухоли альфа. Анализ выполнен в объединенной группе пациентов: ХОБЛ и ХОБЛ + ТБ (n = 116). Ассоциацию стадии GOLD с уровнем цитокина оценивали с помощью ранговой корреляции Спирмена; значения ρ и p приведены в тексте. GOLD (Global Initiative for Chronic Obstructive Lung Disease) – Глобальная инициатива по ХОБЛ, ТБ – туберкулез

 

Среди пациентов с активным туберкулезом (объединенные группы ТБ и ХОБЛ + ТБ, n = 104) проведено сравнение клинико-лабораторных показателей и цитокиновых уровней в зависимости от микробиологического статуса (табл. 4, рис. 3). Уровни всех пяти цитокинов оказались статистически значимо выше у пациентов с положительным бактериовыделением (см. рис. 3). Наибольшие различия зарегистрированы для ИЛ-1β (медиана 32,9 против 13,2 пг/мл, p < 0,001), ИЛ-6 (59,2 против 29,4 пг/мл, p < 0,001), ИЛ-10 (29,1 против 13,4 пг/мл, p < 0,001) и ФНО-α (30,0 против 15,3 пг/мл, p < 0,001). Различия уровня ИЛ-8 были менее выражены (56,0 против 47,4 пг/мл, p = 0,024).

 

Таблица 4. Клинико-лабораторная и иммунологическая характеристика пациентов с положительным (МБТ+) и отрицательным (МБТ-) микробиологическим статусом

Показатель

МБТ+ (n = 59)

МБТ- (n = 45)

Значение p (МУ)

Возраст, лет

68 [57; 74]

67 [61; 73]

0,622

ИМТ, кг/м2

21,5 [19, 2; 23, 8]

20,2 [18, 7; 22, 1]

0,153

ОФВ1, % от должного

72,4 [41, 3; 81, 6]

69,0 [38, 9; 84, 6]

0,748

СРБ, мг/л

30,5 [22, 2; 36, 8]

25,7 [16, 5; 32, 1]

0,047

Альбумин, г/л

35,0 [33, 2; 36, 9]

39,2 [36, 6; 40, 9]

< 0,001

ИЛ-1β, пг/мл

32,9 [24, 6; 45, 5]

13,2 [8, 6; 21, 4]

< 0,001

ИЛ-6, пг/мл

59,2 [44, 7; 71, 7]

29,4 [17, 2; 38, 2]

< 0,001

ИЛ-8, пг/мл

56,0 [45, 1; 75, 2]

47,4 [37, 7; 59, 5]

0,024

ИЛ-10, пг/мл

29,1 [23, 9; 31, 8]

13,4 [10, 8; 15, 8]

< 0,001

ФНО-α, пг/мл

30,0 [22, 7; 37, 4]

15,3 [11, 1; 18, 1]

< 0,001

ИЛ – интерлейкин, ИМТ – индекс массы тела, МБТ – микобактерии туберкулеза, МУ – критерий Манна–Уитни, ОФВ1 – объем форсированного выдоха за первую секунду, СРБ – С-реактивный белок, ФНО-α – фактор некроза опухоли альфа

Данные представлены в виде медианы и межквартильного размаха (Me [Q25; Q75])

 

Рис. 3. Уровни сывороточных цитокинов у пациентов с активным туберкулезом легких в зависимости от статуса бактериовыделения: А – интерлейкин-1β; Б – интерлейкин-6; В – интерлейкин-8; Г – интерлейкин-10; Д – фактор некроза опухоли альфа. Сравнение групп МБТ+ и МБТ- выполнено с помощью критерия Манна – Уитни; значения p приведены в табл. 4. МБТ – микобактерии туберкулеза

 

Для оценки способности отдельных цитокинов разграничивать пациентов по микробиологическому статусу проведен ROC-анализ (табл. 5, рис. 4). Наибольшую дискриминационную способность показали ИЛ-10 (AUC = 0,924) и ФНО-α (AUC = 0,923), за ними следовали ИЛ-1β (AUC = 0,901) и ИЛ-6 (AUC = 0,886). Уровень ИЛ-8 оказался малоинформативным (AUC = 0,629).

 

Таблица 5. Результаты ROC-анализа цитокинов в разграничении пациентов по статусу бактериовыделения

Маркер

AUC

95% ДИ

Порог, пг/мл

Se, %

Sp, %

PPV, %

NPV, %

ИЛ-1β

0,901

0,842–0,960

> 26,1

72,9

97,8

97,7

73,3

ИЛ-6

0,886

0,826–0,947

> 44,9

74,6

88,9

89,8

72,7

ИЛ-8

0,629

0,521–0,738

> 44,5

76,3

48,9

66,2

61,1

ИЛ-10

0,924

0,871–0,978

> 20,7

83,1

93,3

94,2

80,8

ФНО-α

0,923

0,870–0,976

> 22,2

79,7

95,6

95,9

78,2

AUC (area under the curve) – площадь под ROC-кривой, NPV (negative predictive value) – прогностическая ценность отрицательного результата, PPV (positive predictive value) – прогностическая ценность положительного результата, Se (sensitivity) – чувствительность, Sp (specificity) – специфичность, ДИ – доверительный интервал, ИЛ – интерлейкин, ФНО-α – фактор некроза опухоли альфа

Пороги определены по индексу Юдена. К категории высокого риска бактериовыделения относили значения маркера выше порогового (маркер > порога); пороговые значения рассчитаны как середины между соседними наблюдаемыми значениями и не совпадают ни с одним из наблюдений выборки

 

Рис. 4. ROC-кривые сывороточных цитокинов для разграничения пациентов с активным туберкулезом легких по статусу бактериовыделения. Анализ выполнен для интерлейкина (ИЛ) 1β, ИЛ-6, ИЛ-8, ИЛ-10 и фактора некроза опухоли альфа (ФНО-α). Значения AUC, 95% доверительные интервалы, пороговые значения, чувствительность и специфичность приведены в табл. 5

 

Многофакторное моделирование с применением логистической регрессии и комбинацией четырех предикторов (ИЛ-1β, ИЛ-6, ФНО-α и соотношение ИЛ-6/ИЛ-10) дало модель со следующими коэффициентами:

logit(p) = -15,386 + 0,330 × ИЛ-1β + 0,082 × ИЛ-6 + 0,372 × ФНО-α - 1,418 × (ИЛ-6/ИЛ-10).

Внутривыборочная (apparent) AUC равнялась 0,991 (95% ДИ 0,979–1,000) при чувствительности 96,6% и специфичности 95,6%. ОШ для предикторов модели составили: ИЛ-1β – 1,39 (95% ДИ 1,12–1,73; p = 0,003), ФНО-α – 1,45 (1,14–1,85; p = 0,003), соотношение ИЛ-6/ИЛ-10 – 0,24 (0,09–0,67; p = 0,006); вклад ИЛ-6 как самостоятельного предиктора статистической значимости не достиг (ОШ 1,09; 95% ДИ 1,00–1,18; p = 0,061). VIF всех предикторов не превышали 2,2, что указывает на отсутствие значимой мультиколлинеарности, несмотря на одновременное включение ИЛ-6 и соотношения ИЛ-6/ИЛ-10. Учитывая известную тенденцию к завышению apparent-оценки на обучающей выборке, проведены процедуры внутренней валидации (табл. 6) [19, 20].

 

Таблица 6. Результаты валидации многофакторной модели

Метод оценки

AUC (95% ДИ)

Se, %

Sp, %

Внутривыборочная оценка

0,991 (0,979–1,000)

96,6

95,6

Скорректированная на оптимизм (бутстрэп, B = 1000)

0,979

Повторная стратифицированная 5-кратная кросс-валидация (200 повторений)

0,974 (SD 0,009)

AUC (area under the curve) – площадь под ROC-кривой, SD (standard deviation) – стандартное отклонение, Se (sensitivity) – чувствительность, Sp (specificity) – специфичность, ДИ – доверительный интервал

Коррекция AUC на оптимизм выполнена по методу Harrell с 1000 бутстрэп-итераций. Повторная кросс-валидация включала 200 независимых стратифицированных по исходу 5-кратных разбиений выборки; в таблице представлено среднее значение AUC по тестовым фолдам. Для воспроизводимости расчетов использован фиксированный seed; SD – стандартное отклонение AUC по повторениям. Чувствительность и специфичность при кросс-валидации зависят от разбиения и не приводятся

 

После коррекции на оптимизм AUC составила 0,979, при повторной стратифицированной 5-кратной кросс-валидации – 0,974 (стандартное отклонение 0,009); Brier score – 0,035 при удовлетворительной калибровке, что подтверждается и калибровочным графиком (рис. 5).

 

Рис. 5. Калибровочный график многофакторной логистической модели прогнозирования бактериовыделения (МБТ+). Засечки у нижней и верхней осей отражают распределение прогнозируемых вероятностей у пациентов МБТ- и МБТ+ соответственно. Brier score = 0,035. МБТ – микобактерии туберкулеза

 

Обсуждение

Репрезентативность выборки ограничена одноцентровым характером исследования и включением только мужчин 45 лет и старше, что снижает возможность прямой экстраполяции результатов на женщин, пациентов молодого возраста и больных с иными клинико-социальными характеристиками. Вместе с тем сформированные группы отражают клинически релевантные фенотипы пациентов, встречающиеся во фтизиатрической и пульмонологической практике. Основным результатом исследования стало выявление ступенчатого возрастания уровней провоспалительных цитокинов от группы контроля к группе ХОБЛ + ТБ и тесной ассоциации цитокинового профиля с наличием бактериовыделения (AUC для отдельных маркеров варьировала от 0,89 до 0,92). Полученные данные согласуются с представлением о ХОБЛ и туберкулезе как о заболеваниях с пересекающимися механизмами нейтрофильного воспаления и характеризуют иммунологический фенотип их сочетания.

Максимальные уровни ИЛ-1β, ИЛ-6 и ИЛ-8 в группе ХОБЛ + ТБ, значимо превышавшие значения при изолированных заболеваниях, отражают суммирование двух источников нейтрофил-опосредованного воспаления. ИЛ-1β, образующийся при активации инфламмасомы NLRP3, инициирует ранний воспалительный ответ; ИЛ-6 индуцирует синтез белков острой фазы, что подтверждается выявленной в нашей работе высокой по шкале Чеддока корреляцией ИЛ-6 с СРБ (ρ = +0,71); ИЛ-8 выступает ключевым хемоаттрактантом нейтрофилов, и именно для него обнаружена наиболее выраженная обратная связь с ОФВ1 (ρ = -0,67), что согласуется с его ролью в повреждении дыхательных путей при ХОБЛ [14, 16]. Установленный градиент согласуется с данными S. Tang и соавт. [3], показавшими повышение ИЛ-6 и ФНО-α при сочетании ХОБЛ и туберкулеза по сравнению с монопатологией [12].

Принципиально иначе вели себя ИЛ-10 и ФНО-α: их уровни в группах ТБ и ХОБЛ + ТБ статистически значимо не различались (p > 0,05), то есть определялись прежде всего наличием активного туберкулеза, а не его сочетанием с ХОБЛ. Это согласуется с центральной ролью ФНО-α в формировании и поддержании туберкулезной гранулемы и с функцией ИЛ-10 как противовоспалительного цитокина, ограничивающего избыточное повреждение тканей при микобактериальной инфекции [10, 11]. Отсутствие дополнительного прироста уровней этих медиаторов при присоединении ХОБЛ указывает на то, что термин «синергизм» к ним неприменим, а наблюдаемые изменения отражают преимущественно вклад туберкулезного процесса.

Тесная связь цитокинового профиля с бактериовыделением – значимое повышение всех пяти цитокинов у МБТ-положительных пациентов – патогенетически объяснима: активная репликация микобактерий создает мощный антигенный стимул, активирующий инфламмасому NLRP3 и толл-подобные рецепторы и индуцирующий выработку провоспалительных цитокинов [10]. Повышение ИЛ-10 у бактериовыделителей может отражать компенсаторный противовоспалительный ответ, который, ограничивая тканевое повреждение, одновременно способен создавать условия для персистенции возбудителя [10, 11]. Наибольшую дискриминационную способность в отношении бактериовыделения продемонстрировали ИЛ-10 и ФНО-α, что подчеркивает их связь именно с активностью туберкулезного процесса. Сходные данные получены в систематическом обзоре биомаркеров ответа на противотуберкулезную терапию, в котором СРБ, ИЛ-6 и ФНО-α рассматриваются как наиболее перспективные маркеры активности процесса и мониторинга лечения [21].

При возрастании тяжести бронхообструкции по стадиям GOLD уровни провоспалительных цитокинов закономерно увеличивались, тогда как ИЛ-10 не обнаруживал значимой динамики. Подобная диссоциация может отражать истощение компенсаторного противовоспалительного резерва при тяжелой ХОБЛ – феномен, согласующийся с концепцией иммунного истощения и с данными о том, что воздействие табачного дыма усугубляет легочное воспаление и нарушает противоинфекционную защиту [12, 22]. Поскольку активный туберкулез сам по себе повышает уровни цитокинов, вклад статуса заболевания оценен с помощью частных корреляций: связь стадии GOLD с провоспалительными цитокинами сохранялась и после поправки на групповую принадлежность, что свидетельствует о ее самостоятельном характере. Полученные результаты дополняют данные российских исследований цитокинового профиля при ХОБЛ [14–16].

Многофакторная модель показала высокую дискриминационную способность (AUC равнялась 0,99 на обучающей выборке и 0,97 после внутренней валидации) при удовлетворительной калибровке и отсутствии значимой мультиколлинеарности предикторов. Тем не менее, учитывая одномоментный дизайн, эти результаты следует рассматривать как описание силы ассоциации цитокинового профиля с микробиологическим статусом, а не как готовый клинический диагностический инструмент; для последнего необходима внешняя валидация на независимых проспективных когортах. Возможность использования панелей сывороточных цитокинов и хемокинов для характеристики активности туберкулезной инфекции активно изучается [23]. Практическое значение полученных данных состоит в возможности исследовательской стратификации пациентов по воспалительному фенотипу и формирования гипотез для дальнейших исследований; при этом цитокиновый профиль сам по себе не может служить основанием для коррекции режима противотуберкулезной химиотерапии, который определяется лекарственной чувствительностью возбудителя, формой туберкулеза, переносимостью препаратов и клиническими рекомендациями.

Ограничения исследования: одномоментный дизайн, не позволяющий оценить динамику цитокинов на фоне химиотерапии; включение только мужчин ≥ 45 лет; отсутствие внешней валидации модели на независимой когорте; отсутствие данных о лекарственной устойчивости микобактерий, фазе лечения и сопутствующей терапии (бронходилататоры, ингаляционные глюкокортикостероиды). Указанные ограничения могли привести к завышению дискриминационной способности модели, поскольку оценка выполнена на той же клинической выборке, из которой отбирались предикторы. Отсутствие данных о фазе лечения и лекарственной устойчивости микобактерий также не позволяет исключить их вклад в вариабельность цитокинового профиля.

Заключение

Сочетание ХОБЛ и активного туберкулеза легких сопровождалось наиболее выраженной активацией провоспалительных цитокинов: максимальные сывороточные уровни ИЛ-1β, ИЛ-6 и ИЛ-8 зарегистрированы в группе ХОБЛ + ТБ и значимо превышали значения при изолированных формах заболеваний. Уровни ИЛ-10 и ФНО-α при сочетанной патологии были повышены, однако статистически значимо не отличались от показателей при изолированном туберкулезе, что указывает на ведущую роль активного туберкулезного процесса в их формировании.

Уровни цитокинов значимо коррелировали с показателями системного воспаления и тяжести бронхолегочной патологии, включая СРБ, СОЭ, НЛИ, ОФВ1 и SpO2. При увеличении тяжести ХОБЛ по стадиям GOLD наблюдалось возрастание уровней провоспалительных цитокинов без параллельного повышения ИЛ-10. Цитокиновый профиль был тесно ассоциирован с наличием бактериовыделения у пациентов с активным туберкулезом легких. Многофакторная модель показала высокую внутривыборочную дискриминационную способность, однако ее прогностическая ценность требует подтверждения в независимых проспективных исследованиях. Полученные данные позволяют рассматривать сывороточный цитокиновый профиль как исследовательский инструмент стратификации воспалительного фенотипа у пациентов с коморбидной патологией ХОБЛ и туберкулеза.

Дополнительная информация

Финансирование

Исследование выполнено в рамках инициативной научно-исследовательской работы ФГБОУ ВО РязГМУ Минздрава России. Внешнее финансирование отсутствовало.

Конфликт интересов

Авторы декларируют отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Участие авторов

С.Н. Котляров – концепция исследования, клиническое сопровождение, интерпретация результатов, написание текста статьи; Д.Н. Оськин – клиническое сопровождение, интерпретация результатов, статистический анализ, написание текста статьи, оформление таблиц и рисунков; М.А. Слабачкова – проведение исследования, определение показателей методом твердофазного иммуноферментного анализа. Все авторы прочли и одобрили финальную версию статьи перед публикацией, согласны нести ответственность за все аспекты работы и гарантируют, что ими надлежащим образом были рассмотрены и решены вопросы, связанные с точностью и добросовестностью всех частей работы.

Благодарности

Авторы благодарят сотрудников ФГБОУ ВО РязГМУ Минздрава России, оказавших организационную помощь при выполнении исследования.

 

1 2024 GOLD Report. GLOBAL strategy for prevention, diagnosis and management of COPD: 2024 Report. Available from: https://goldcopd.org/2024-gold-report/ (accessed June 13, 2026).

2 Хроническая обструктивная болезнь легких. Клинические рекомендации Министерства здравоохранения РФ. 2024. Доступно по: https://cr.minzdrav.gov.ru/preview-cr/603_3 (дата обращения 13.06.2026).

3 Туберкулез у взрослых. Клинические рекомендации Министерства здравоохранения РФ. 2025. Доступно по: https://cr.minzdrav.gov.ru/preview-cr/16_4 (дата обращения 13.06.2026).

×

About the authors

Stanislav N. Kotlyarov

Ryazan State Medical University

Email: skmr1@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-7083-2692

MD, PhD, Associate Professor, Head of the Department of Nursing

Russian Federation, 9 Vysokovoltnaya ul., Ryazan, 390026

Dmitry N. Oskin

Ryazan State Medical University

Author for correspondence.
Email: doctor.oskin@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-8966-2702

MD, PhD, Associate Professor, Department of Infectious Diseases and Phthisiology

Russian Federation, 9 Vysokovoltnaya ul., Ryazan, 390026

Maria A. Slabachkova

Ryazan State Medical University

Email: kopanitsa412@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0001-7476-4538

PhD (in Biol.), Associate Professor, Department of Pharmaceutical Chemistry and Pharmacognosy

Russian Federation, 9 Vysokovoltnaya ul., Ryazan, 390026

References

  1. Sin DD, Anthonisen NR, Soriano JB, Agusti AG. Mortality in COPD: Role of comorbidities. Eur Respir J. 2006;28(6):1245–1257. doi: 10.1183/09031936.00133805.
  2. Byrne AL, Marais BJ, Mitnick CD, Lecca L, Marks GB. Tuberculosis and chronic respiratory disease: A systematic review. Int J Infect Dis. 2015;32:138–146. doi: 10.1016/ j.ijid.2014.12.016.
  3. Tang S, Cui H, Yao L, Hao X, Shen Y, Fan L, Sun H, Zhang Z, Huang JA. Increased cytokines response in patients with tuberculosis complicated with chronic obstructive pulmonary disease. PLoS One. 2013;8(4):e62385. doi: 10.1371/journal.pone.0062385.
  4. Sarkar M, Srinivasa, Madabhavi I, Kumar K. Tuberculosis associated chronic obstructive pulmonary disease. Clin Respir J. 2017;11(3):285–295. doi: 10.1111/crj.12621.
  5. Kayongo A, Nyiro B, Siddharthan T, Kirenga B, Checkley W, Lutaakome Joloba M, Ellner J, Salgame P. Mechanisms of lung damage in tuberculosis: Implications for chronic obstructive pulmonary disease. Front Cell Infect Microbiol. 2023;13:1146571. doi: 10.3389/fcimb.2023.1146571.
  6. Gai X, Allwood B, Sun Y. Post-tuberculosis lung disease and chronic obstructive pulmonary disease. Chin Med J (Engl). 2023;136(16):1923–1928. doi: 10.1097/CM9.0000000000002771.
  7. Feng J, Hu M, Duan H. Bidirectional association between tuberculosis and chronic obstructive pulmonary disease: A systematic review and meta-analysis. J Clin Med. 2025;14(21):7639. doi: 10.3390/jcm14217639.
  8. Gai X, Allwood B, Sun Y. Advances in the awareness of tuberculosis-associated chronic obstructive pulmonary disease. Chin Med J Pulm Crit Care Med. 2024;2(4):250–256. doi: 10.1016/j.pccm.2024.08.008.
  9. van Zyl Smit RN, Pai M, Yew WW, Leung CC, Zumla A, Bateman ED, Dheda K. Global lung health: The colliding epidemics of tuberculosis, tobacco smoking, HIV and COPD. Eur Respir J. 2010;35(1):27–33. doi: 10.1183/09031936.00072909.
  10. Domingo-Gonzalez R, Prince O, Cooper A, Khader SA. Cytokines and chemokines in mycobacterium tuberculosis infection. Microbiol Spectr. 2016;4(5):10.1128/microbiolspec.TBTB2-0018-2016. doi: 10.1128/microbiolspec.TBTB2-0018-2016.
  11. Cooper AM, Mayer-Barber KD, Sher A. Role of innate cytokines in mycobacterial infection. Mucosal Immunol. 2011;4(3):252–260. doi: 10.1038/mi.2011.13.
  12. Kotlyarov S, Oskin D. The role of inflammation in the pathogenesis of comorbidity of chronic obstructive pulmonary disease and pulmonary tuberculosis. Int J Mol Sci. 2025;26(6):2378. doi: 10.3390/ijms26062378.
  13. Chavda VP, Bezbaruah R, Ahmed N, Alom S, Bhattacharjee B, Nalla LV, Rynjah D, Gadanec LK, Apostolopoulos V. Proinflammatory cytokines in chronic respiratory diseases and their management. Cells. 2025;14(6):400. doi: 10.3390/cells14060400.
  14. Trushina EYu, Kostina EM, Molotilov BA, Tipikin VA, Baranova NI. [Role of IL-4, IL-6, IL-8, IL-10 cytokines in the immunopathogenesis of chronic obstructive pulmonary disease]. Medical Immunology (Russia). 2019;21(1):89–98. Russian. doi: 10.15789/1563-0625-2019-1-89-98.
  15. Kalinina EР, Lobanova ЕG. [Cytokine profile features in patients with chronic obstructive pulmonary disease]. Medical Immunology (Russia). 2012;14(6):501–506. Russian. doi: 10.15789/1563-0625-2012-6-501-506.
  16. Blinova TV, Strakhova LA, Lavrenyuk NA, Umnyagina IA. [Serum cytokine profile in stable patients with work-related chronic obstructive pulmonary disease and relationship to other inflammatory markers]. Pulmonologiya. 2015;25(5):566–573. Russian. doi: 10.18093/0869-0189-2015-25-5-566-573.
  17. Budnevsky AV, Avdeev SN, Ovsyannikov ES, Shishkina VV, Alekseeva NG, Perveeva IM, Kitoyan AG, Antakova LN, Yurchenko AS. [Role of transforming growth factor-β in pathogenesis of pulmonary fibrosis in COVID-19, post-COVID syndrome, oncological and chronic inflammatory lung diseases]. I.P. Pavlov Russian Medical Biological Herald. 2024;32(3):499–510. Russian. doi: 10.17816/PAVLOVJ625007.
  18. Robin X, Turck N, Hainard A, Tiberti N, Lisacek F, Sanchez JC, Müller M. pROC: An open-source package for R and S+ to analyze and compare ROC curves. BMC Bioinformatics. 2011;12:77. doi: 10.1186/1471-2105-12-77.
  19. Harrell FE Jr, Lee KL, Mark DB. Multivariable prognostic models: issues in developing models, evaluating assumptions and adequacy, and measuring and reducing errors. Stat Med. 1996;15(4):361–387. doi: 10.1002/(SICI)1097-0258(19960229)15:4<361::AID-SIM168>3.0.CO;2-4.
  20. Steyerberg EW, Vickers AJ, Cook NR, Gerds T, Gonen M, Obuchowski N, Pencina MJ, Kattan MW. Assessing the performance of prediction models: A framework for traditional and novel measures. Epidemiology. 2010;21(1):128–138. doi: 10.1097/EDE.0b013e3181c30fb2.
  21. Zimmer AJ, Lainati F, Aguilera Vasquez N, Chedid C, McGrath S, Benedetti A, MacLean E, Ruhwald M, Denkinger CM, Kohli M. Biomarkers that correlate with active pulmonary tuberculosis treatment response: A systematic review and meta-analysis. J Clin Microbiol. 2022;60(2):e0185921. doi: 10.1128/JCM.01859-21
  22. Lugade AA, Bogner PN, Thatcher TH, Sime PJ, Phipps RP, Thanavala Y. Cigarette smoke exposure exacerbates lung inflammation and compromises immunity to bacterial infection. J Immunol. 2014;192(11):5226–5235. doi: 10.4049/jimmunol.1302584.
  23. Mensah GI, Amponsah JA, Alahaman NB, Anim-Baidoo I, Tetteh JKA, Addo KK, Koram KA. Performance of eight serum cytokine/chemokine biomarkers in discriminating between active and latent tuberculosis infection in Ghana. Front Immunol. 2025;16:1600712. doi: 10.3389/fimmu.2025.1600712.

Supplementary files

Supplementary Files
Action
1. JATS XML
2. Fig. 1. Distribution of serum cytokine levels in the study groups: А, interleukin-1β; B, interleukin-6; C, interleukin-8; D, interleukin-10; E, tumor necrosis factor-α. Intergroup differences were assessed using the Kruskal–Wallis test followed by pairwise comparisons with the Mann–Whitney test and Bonferroni correction; p-values are shown in Tаble 2. COPD, chronic obstructive pulmonary disease; TB, tuberculosis

Download (201KB)
3. Fig. 2. Serum cytokine levels by GOLD stage of chronic obstructive pulmonary disease (COPD): A, interleukin-1β; B, interleukin-6; C, interleukin-8; D, interleukin-10; E, tumor necrosis factor-α. Analysis was performed in the combined patient group: COPD and COPD + TB (n = 116). Association of GOLD stage with cytokine level was assessed using Spearman’s rank correlation; ρ and p-values are given in the text. GOLD, Global Initiative for Chronic Obstructive Lung Disease; TB, tuberculosis

Download (172KB)
4. Fig. 3. Serum cytokine levels in patients with active pulmonary tuberculosis by bacterial shedding status: A, interleukin-1β; B, interleukin-6; C, interleukin-8; D, interleukin-10; E, tumor necrosis factor-α. Comparison of MTB+ and MTB- groups was performed using the Mann–Whitney test; p-values are shown in Tаble 4. MTB, Mycobacterium tuberculosis

Download (121KB)
5. Fig. 4. ROC curves of serum cytokines for differentiating patients with active pulmonary tuberculosis by bacterial shedding status. Analysis was performed for interleukin (IL)-1β, IL-6, IL-8, IL-10, and tumor necrosis factor-α (TNF-α). AUC values, 95% confidence intervals, cut-off values, sensitivity and specificity are shown in Tаble 5

Download (84KB)
6. Fig. 5. Calibration plot of the multivariate logistic model for predicting bacterial shedding (MTB+). Ticks on the lower and upper axes reflect the distribution of predicted probabilities in MTB- and MTB+ patients, respectively. Brier score = 0.035. MTB, Mycobacterium tuberculosis

Download (108KB)
7. Tables
Download (26KB)

Copyright (c) Oskin D., Kotlyarov S.N.

Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.